V12 Bioinformatik-Tools für HT Proteinanalyse

Präsentation zum Thema: "V12 Bioinformatik-Tools für HT Proteinanalyse"—  Präsentation transkript:

1 V12 Bioinformatik-Tools für HT Proteinanalyse
traditionelle Ansätze: reduktionistisch; finde einzelne Gene und die kodierten Proteinprodukte, die einen beobachteten Phänotyp definieren. Oft werden hierdurch komplexe Systeme zu stark vereinfacht. Hoch-Durchsatzmethoden: parallele Untersuchung vieler gleichzeitiger Vorgänge omics-Welt: Genomics, Proteomics, Metabolomics, Transcriptomics ... 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

2 Wie soll man das Proteom untersuchen?
Proteomics zerfällt derzeit in 2 Bereiche Expression Proteomics katalogisiere alle Proteine in einer Probe differentielle Expression: Unterschied zwischen mehreren Proben Cell-map Proteomics Protein-Protein Wechselwirkung Protein-Liganden Wechselwirkung zelluläre Lokalisation 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

3 Expressions-Proteomik
Das zelluläre Proteom enthält ende von Proteinen, deren Konzentrationen mehr als 106 fach verschieden sind. Prof. Walter (UdS) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

4 Technologien in Proteomics
Separation von Proteinen 2-D gel Elektrophorese Flüssig-Chromatographie Affinitäts-Chromatographie Annotation einzelner Proteine Massenspektroskopie kombinierte HPLC und MS Protein-Quantifizierung mit MS Protein-Chips 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

5 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik
Proteinanalyse auf einer proteomischen Skala Phizicky et al. Nature 422, 208 (200) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

6 Analytische versus funktionelle Protein-Microarrays
(a) analytische Microarrays: beobachte Proteinexpression und klinische Diagnostik. Vergleiche Proteinproben zweier biologischer Zustände, wobei die Protein entweder mit einem grünen oder mit einem roten Farbstoff gelabelt werden. Wenn eine Farbe überwiegt, liegt das Protein vornehmlich in dem entsprechenden Zustand vor. (b) funktionelle Microarrays: visualisieren Proteinaktivität, -bindung oder posttranslationelle Modifikationen. Auch geeignet um Substrat- oder Inhibitor-bindung an Enzyme zu messen und zur Konstruktion biologischer Netzwerke. Phizicky et al. Nature 422, 208 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

7 Yeast Two-Hybrid Methoden
(a) die DNA-bindende und die Aktivierungsdomänen (Kreise) sind an die Protein X und Y fusioniert. Genexpression des Reporters beginnt. (b) Standard-2YH-Suche von X gegen eine komplexe Bibliothek von zufälligen, mit Y fusionierten Peptid-Schnipseln. (c) 2YH-Array. Screene X gegen komplette Satz von ORFs. Phizicky et al. Nature 422, 208 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

8 Fluoreszenz entdeckt posttranslationelle Modifikationen
(c) Fluoreszenz-Resonanz-Energietransfer (FRET) zwischen grünem GFP und Farb-stoffmolekül nur wenn gelbes Protein – ein Antikörper gegen phosphorylierte Tyrosin-reste - an rotes Protein gebunden ist. FRET ist stark distanzabhängig, Detektion bis 6 nm Abstand. Bindung (rechts) führt zu schnellerem Abfall der Fluoreszenz (unten). (b) In vivo Beispiel. Farbkodierung des Gewebes gemäss Fluoreszenzdauer des GFP-Signals  wieviel phosphoryliertes Tyrosin besitzt rotes Protein? (a) cDNA-Scan. Jeder Punkt enthält Zellen, bei denen GFP an unterschiedliche (rote) Proteine fusioniert ist. Phizicky et al. Nature 422, 208 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

9 Disease Proteomics Hanash, Nature 422, 226
- entdecke veränderte Proteinexpression nicht nur in Zellen bzw. Geweben, sondern auch in Subzellulären Strukturen, in Proteinkomplexen und in biologischen Flüssigkeiten - entwickle neue Biomarker für Diagnose und Früherkennung von Krankheiten - identifiziere neue Targets für Therapieansätze - beschleunige die Entwicklung von Medikamenten 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

10 Zweidimensionale Gelelektrophorese (2D PAGE)
2D Polyacrylamid-Gel für ein Biopsie-Probe mit menschlicher Leber. In x-Richtung – nichtlinearer pH-Gradient - geschieht eine Auftrennung nach dem isoelektrischen Punkt (bei welchem pH ist die Ladung des Proteins neutral?). In y-Richtung geschieht durch Variation des Anteils an Polyacrylamid eine Trennung nach der molekularen Masse. Problem: man kann nur Proteine visualisieren, die relativ häufig vorkommen. Banks et al. Lancet 356, 1749 (2000) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

11 Annotation von 2D-Gelen: mühsam
Banks et al. Lancet 356, 1749 (2000) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

12 Fallstudie: Expressions-Proteomik
Proteine des Rinderherzen: welche Proteine sind im Herzen von Rindern mit einer vererbten Kardiomyopathie reduziert? Die Balken 1-6 stammen von Kardiomyopathie-diagnostizierten Rindern, 7-12 von gesunden Rindern sind Rinder, die selbst klinisch normal sind, aber von kranken Rindern abstammen (nur SPP 943 ist deutlich abgesenkt). Banks et al. Lancet 356, 1749 (2000) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

13 (Bio)informatische Aufgaben bei Analyse von 2D-Gelen
Zwei Gele stimmen oft in Grösse, Kontrast, Auftrennung in x- und y-Richtung nicht überein. Darüberhinaus treten Unterschied als Folge der experimentellen Bedingungen auf. Der Vergleich zweier Gele erfordert daher oft Methoden der Bildbearbeitung, z.B. mit dem Programm Flicker Eine Laplace-Transformation verbessert die Übereinstimmung zwischen dem linken und rechten Gel erheblich in (b) gegenüber (a). Lemkin PF, Electrophoresis, 18, (1997) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

14 Fraktionierung der Probe vor 2D PAGE-Analyse
Oft gibt es das Problem, dass die Proteineigen-schaften über einen sehr grossen Bereich variieren. Lösung: konzentriere auf Teil der Proteine. z.B. (a) versehe die ansonsten schwer detek-tierbaren Proteine an der Membranoberfläche mit einem Biotin ‚Anker‘ (tag). Auftrennung in 2D-Gel. Erkenne die markierten Proteine mit Avidin. Identifikation mit MS. (b) Getrennte Visualisierung der markierten Proteine (oben) gegenüber der Darstellung des gesamten Zell-Lysats (unten). Dies erlaubte die Identifikation neuer Proteine auf der Oberfläche von Krebszellen. Hanash, Nature 422, 226 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

15 Einsatz von 2D PAGE-Analyse in medizinischer Diagnose
Die Probleme von 2D Gelen sind, dass die Methode nicht für grosse Mengen an Proben (HTS) geeignet ist und relative grosse Probenmengen benötigt. Die Analyse von klinischen Proben wird durch die Heterogenität des Gewebes kompliziert. Hanash, Nature 422, 226 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

16 Direkte Visualisierung der Protein-Verteilung mit MS
Ein gefrorener Schnitt durch ein Rattengehirn wird mit einem MALDI MS-Gerät abgetastet. Hier: je 15 Spektren für 74  75 Punkte, gleichzeitige Aufnahme aller Massen. Visualisiere den Schnitt getrennt für verschiedene Verhältnisse von Masse und Ladung (jeweils oben rechts gezeigt). z.B. ist die Proteindichte für m/z=6844 recht gering. Ziel: vergleiche gesundes und krankes Gewebe. Hanash, Nature 422, 226 (2003) Aufgabe: Bildverarbeitung 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

17 Functional Proteomics
Konstruktion eines fluoreszenten Liganden für Serin-Hydrolasen. (b) Messe die Fluoreszenz in gesunden und Krebszellen. Identifiziere einen Cluster von Protease-Lipasen und Esterasen, deren Anteil in Krebslinien aus verschiedenen Geweben unterschiedlich ist. Hanash, Nature 422, 226 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

18 Proteomik mit MS Aebersold, Mann, Nature 422, 198 (200)
12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

19 Proteomics mit Massenspektroskopie (MS)
(1) Aufreinigung (SDS-PAGE). Banden ausschneiden. (2) Problem: Gesamtmasse eines Proteins ist nicht aussagekräftig. Daher Trypsin (Protease)-Verdau  Peptidschnipsel unterschiedlicher Länge, diese sind charakteristisch für Protein. (3) MS-Analyse in Vakuum (4) Detektion der Massenintensität bei vorgegebenem Verhältnis von Masse m und Ladung z. (5) Weitere Auftrennung der einzelnen Peptidschnipsel in zweitem MS-Schritt. Teilweise Sequenzierung möglich. Aufgabe: Annotation des Proteins aus Sequenz-Datenbank. Tyers, Mann, Nature 422, 193 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

20 Sequenzdiversität in der Zelle: Analyse mit MS
Organismus kodiert über das Genom viele Isoformen. Identifikation der Proteine durch Datenbanksuche um die Lücken der exp. Daten zu füllen. Sequenz-Datenbanken enthalten jedoch keine komplette Information über die natürlich auftretende Sequenzdiversität. Rappsilber, Mann, TIBS, 27, 74 (2002) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

21 Iterativer Zyklus in Systems Biology
Tyers, Mann, Nature 422, 193 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

22 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik
Structural Proteomics Sali, Glaeser, Earnest, Baumeister, Nature 422, 216 (2003) Ungerichtete Diffusion aller Proteine ist keine geeignete Organisationsform von biologischen Zellen. Stattdessen übernehmen stabile oder transient gebildete Proteinkomplexe viele wichtige zelluläre Funktionen. 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

23 bekannte Proteinstrukturen
PDZ Domäne CheA Aquaporin Ribosom Grosse Proteine und Proteinkomplexe sind in der PDB-Datenbank unterrepräsentiert. Es wird geschätzt, dass jeder Proteinkomplex für Hefe ca. 7.5 Proteine enthält. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

24 Struktur grosser Komplexe: Kombination von EM + X-ray
Bioinformatik: docke atomare X-ray Struktur von Tubulin (3.5 Å Auflösung) in 8Å-EM-Struktur eines Microtubulis. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

25 Einzel-Partikel-Analyse mit EM
(a) Komplexe von ca. 44 Tripeptidyl-Peptidase II Molekülen auf einer Oberfläche. Das Bild zeigt verschiedene gemittelte Ansichten von Komplexen, die jeweils die gleiche Orientierung haben ( Bildverarbeitung). (b) 3D-Rekonstruktion des TPP II-Komplexes bei 3.3 nm Auflösung. Verschiedene Blickrichtungen. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

26 Information über Makromolekülkomplexe
‚Subunit structure‘ : atomare Auflösung < 3 Å ‘Subunit shape’ : mittlere Auflösung > 3 Å ‘Subunit contact’: Kenntnis über direkte Kontakte zwischen Unter-einheiten ‘Subunit proximity’: Untereinheiten müssen nicht in direktem Kontakt stehen. graue Boxen kennzeichnet grosse experimentelle Schwierigkeiten. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

27 Hybrid-Methoden für Makromolekulare Komplexe
Structural Bioinformatics (a) Integration verschiedener Protein- Elemente zu einem Komplex. (b) Teilweise atomares Modell des gesamten Hefe-Ribosoms durch Fits von atomaren Modellen für rRNA und Proteinmodellen in eine EM-Elektronen-dichte-Mappe des 80S Ribosoms. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

28 Elektronen-Tomographie
(a) Vom Objekt (Mitte) gestreute Elektronen werden in einem Halbkreis aufgefangen. Ausserdem wird das Objekt in kleinen Schritten gedreht. (b) Rekonstruktion (Mathematik): Rück-Projektion der bei verschiedenen Drehwinkeln aufgenommenen Streuinfor-mationen. Die Überlagerung ergibt ein Tomogramm. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

29 Science Fiction: “Interaktom” einer Zelle
links: ein Tomogramm einer Zelle stellt im Prinzip ein räumliches Bild des gesamten Proteoms einer Zelle dar. Allerdings ist die Auflösung begrenzt. Versuche dann, die „Templates“ einzelner Proteine so anzuordnen, dass sich eine optimale Übereinstimmung mit dem linken Bild ergibt. Sali et al. Nature 422, 216 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

30 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik
Software-Tools der Systems Biology: werden natürlich derzeit intensiv entwickelt 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

31 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik
GeneMAPP Fettsäure-Abbau-Pfad. Jede Box stellt ein Gen dar. Farbkodierung analog zu Genexpressionsdaten. Rot bedeutet > 1.2 fach grössere Expression in Mäusen mit Kardio-myopathie. Blau bedeutet > 1.2 fach geringere Expression. 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

32 Visualisierung von Protein-Wechselwirkungen
Darstellung von Wechselwirkungen. Stark vernetzte Komplexe sind am Rand gezeigt. Tyers, Mann, Nature 422, 193 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik

33 Fazit: Bioinformatik verbindet Genomics und Proteomics
Bioinformatik bzw. Computational Biology wird ultimativ ein integriertes Bild des biologischen Systems erlauben. Tyers, Mann, Nature 422, 193 (2003) 12. Vorlesung WS 2004/05 Softwarewerkzeuge der Bioinformatik