Molekularbiologische Arbeitstechniken

Präsentation zum Thema: "Molekularbiologische Arbeitstechniken"—  Präsentation transkript:

1 Molekularbiologische Arbeitstechniken
Ergebnisbericht A von Kim Ortmeier

2 Gliederung Vorstellung der Experimente
Ziel der Experimente Theorie Gesamtergebnisse des Kurses Diskussion Alle Versuche werden nach den Anweisungen im Skript durchgeführt, Abweichungen werden im Folgenden beschrieben.

3 Expression und Reinigung
Aus den Bakterien werden die Proteine extrahiert und aufgereiniget: Durch Quarzsand werden die Zellen mechanisch aufgeschlossen Durch kochen denaturieren die Proteine Waschen und eluieren

4 Expression und Reinigung Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: Aufschluss 100 ml Kultur פּ, Pellet waschen (mit 100 ml Waschpuffer), פּ Pellet in 3 ml Aufschlusspuffer resuspendieren Aufschlußpuffer enthielt bei den Gruppen 4-6 zusätzlich noch 5mM Imidazol In Ribotube überführen פּ (3x 30 sec; 6,5 ms; da zwischen jeweils 1 min auf Eis) 45 min, 4°C, rpm פּ, Überstand in Eppi

5 Expression und Reinigung Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: B) Wasch I: 5 mM => 0,2 ml C) Wasch II: 10 mM => 0,4 ml D) Eluat III: 50 mM => 2 ml E) Eluat IV: 150 mM => 6 ml F) Eluat V: 250 mM => 10 ml Auf je 10 ml mit Aufschlußpuffer auffüllen

6 Expression und Reinigung Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: Es werden verschiedene Mengen an Protein auf die Säule gegeben Gruppe > 4 mg Protein Gruppe > 6 mg Protein Gruppe > 8 mg Protein

7 Bradford- Test Colorimetrische Methode zur Quantifizierung von Proteinen Coomassie Brillant Blue bindet an Proteine Menge des Farbstoffes wird im Photometer bei OD595 gemessen Konzentration wird mit Formel berechnet: c = (MeßwertOD595 x Verdünnung x 16,2)/ Meßvolumen [µg/µl]

8 Bradford- Test Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: Verdünnungsreihe der Kultur: 1:40 -> 25 µl Kultur µl Waschpuffer 1:50 -> 20 µl der 1:40 Verd µl Waschpuffer (1:200 Verdünnung) Je 2x 200 µl BioRAD µl der 1:50 (1:2000) Verdünnung

9 Bradford- Test Gruppenergebnisse
Es wurden je 2 Proben gemessen -> Mittelwertbildung = Messwert Mittelwert des Proteingehaltes aller Gruppen = 8,547 µg/µl Gruppe Proteingehalt [µg/µl] 1 10,886 2 10,805 3 7,744 4 7,03 5 7,468 6 7,35

10 SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese
Gelelektrophorese von Proteinen -> ausschließlich Polyacrylamid als Träger Separierung der einzelnen Substanzen hängt ab von: ihrer unterschiedlichen Ladungen Porengröße des Gels Größe/ Gestalt der Moleküle pH- Wert, Temperatur, Ionenstärke des Puffers Elektrische Feldstärke Diskontinuierliches Verfahren

11 SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: Zusammensetzung für 1 Trenngel (12,5 %): 1,88 Tris pH 8,8 -> 1,2 ml 0,5 % SDS -> 1,2 ml H2O -> 1,1 ml Bisacrylamid -> 2,5 ml TEMED -> 5 µl APS -> 30 µl

12 SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: Zusammensetzung für 1 Sammelgel (5 %): 0,625 Tris/ HCl pH 6,8 -> 0,4 ml 0,5 % SDS -> 0,4 ml H2O -> 0,87 ml Bisacrylamid -> 0,33 ml TEMED -> 2 µl APS -> 10 µl

13 SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese Versuchsdurchführung
Abweichungen vom Skript: Zusammen führen der Fraktionen mit Puffer: Roh-Protein: 8 µg/µl + 3 µl Puffer Bindung Wasch I + II Eluat III – V Ca. 5 min Kochen der Proben bei 100°C Abkühlen, zentrifugieren und beladen der Taschen im Gel mit den Proben je 12 µl + 3 µl Puffer

14 Coomassie- Blue- Färbung des Gels
Proteinbanden im Gel werden durch Coomassie- Blue sichtbar gemacht Coomassie- Blue in sauer Umgebung als Anion mit den Aminogruppen der Proteine

15 Vergleich der Gele der 1.+ 2. Gruppe
SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese, Coomassie- Blue Färbung Gruppenergebnisse Vergleich der Gele der Gruppe M R B W1 W2 E3 E4 E5 R M B W1 W2 E3 E4 E5 M= Marker, R= Rohextrakt, B= Bindung, W1+2= Wasch 1 +2, E 3-5= Eluat 3-5

16 Vergleich der Gele der 3.+ 4. Gruppe
SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese, Coomassie- Blue Färbung Gruppenergebnisse Vergleich der Gele der Gruppe R B M W1 W2 E3 E4 E5 R B W1 M W2 E3 E4 E5 M= Marker, R= Rohextrakt, B= Bindung, W1+2= Wasch 1 +2, E 3-5= Eluat 3-5

17 Vergleich der Gele der 5.+ 6. Gruppe
SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese, Coomassie- Blue Färbung Gruppenergebnisse Vergleich der Gele der Gruppe R B W1 W2 M E3 E4 E5 R B W1 W2 E3 M E4 E5 M= Marker, R= Rohextrakt, B= Bindung, W1+2= Wasch 1 +2, E 3-5= Eluat 3-5

18 1., 2. und 3. Gruppe M 4., 5. und 6. Gruppe M= Marker

19 SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese, Coomassie- Blue Färbung Diskussion
Es ist gut sichtbar, dass die Reinigung relativ gut geklappt hat und dass metY in einer Bande in der Reihe E5 konzentriert vorliegt. Man kann aber keine deutlichen Unterschiede zwischen den Gelen mit verschieden aufgetragenen Proteinmengen erkennen. Unterschiede wären vielleicht zu erkennen gewesen, wenn nicht die gleichen Volumina, sondern die gleichen Molekulargewichte aufgetragen worden wären.

20 SDS- Polyacrylamidgelelektrophorese, Coomassie- Blue Färbung Diskussion
Außerdem lässt sich keine starke Verbesserung in Bezug auf die Reinheit der Eluatreihen, durch die Zugabe von 5 mM Imidiazol (Gruppen 4-6) feststellen. Eine größere Menge an Imidiazol würde vielleicht einen Unterschied erkennen lassen.

21 Danke, das war´s!