Bestimmung der Kontaminationsquellen bei einem Patienten

Präsentation zum Thema: "Bestimmung der Kontaminationsquellen bei einem Patienten"—  Präsentation transkript:

1 Bestimmung der Kontaminationsquellen bei einem Patienten

2 Perfusionsflüssigkeit mit Schmerzmittel
Zusammenhang Der Patient, Opfer der Infektion, wurde aufgrund einer Operation ins Krankenhaus eingeliefert. Während seines Krankenhausaufenthaltes erhielt er jeden Tag verschiedene Pflege und Behandlungen: Perfusionsflüssigkeit mit Schmerzmittel Reinigung der Narbe Physiologisches Reinigungswasser verunreinigt ? Katheter verunreinigt ? Perfusions-flüssigkeit verunreinigt ? Kompressen verunreinigt ?

3 1. Nachweis von bakteriellen Verunreinigungen auf Kompressen

4 Verfügbares Material Zu testende Kompressentasche
Spezielle Agar-Kontakt-petrischale

5 WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des
1.1. Öffnen Sie eine Kompressen-tasche. 1.2. Legen Sie eine Kompresse bei leichtem Druck für 10 Sekunden auf eine Agar-Kontakt-petrischale. WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des Bunsenbrenners durchzuführen.

6 1.3. Benutzen Sie eventuell eine Pinzette, um die Kompresse zu entfernen und schließen Sie danach die Box. 1.4. Schreiben Sie auf den Boden der Petrischale “Box 1” und die Nummer Ihres Tisches. Inkubieren Sie “Box 1” für 24 h bei 37°C.

7 2. Nachweis von bakteriellen Verunreinigungen im physiologischen Reinigungswasser

8 Verfügbare Materialien
Zu testendes physiologisches Reinigungswasser (PW) Agar Petri-schale Sterile Pipette Steriler Drigalski-spatel

9 WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des
2.1. Öffnen Sie die PW-Flasche und entnehmen Sie 0,5 ml Probe mit einer sterilen Pipette. 2.2. Lassen Sie 2 oder 3 Tropfen auf die Oberfläche der Agar-Petrischale herunterfallen. WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des Bunsenbrenners durchzuführen.

10 Inkubieren Sie für 24 h bei 37°C.
Drigalski-spatel Agar 2.3. Verteilen Sie die Tropfen auf der Oberfläche des Agars mit einem sterilen Drigalskispatel. Verteilung auf der vollständigen Oberfläche des Agars. Nicht zu stark drücken, um eine Beschädigung des Agars zu vermeiden. 2.4. Schließen Sie die Petrischale. Schreiben Sie auf den Boden der Schale “Box 2” und die Nummer Ihres Tisches. Inkubieren Sie für 24 h bei 37°C.

11 3. Nachweis von bakteriellen Verunreinigungen in einem Katheter

12 Verfügbare Materialien
Wattestäbchen Agar-Petrischale Zu testender Katheter

13 WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des
3.1. Nehmen Sie den Katheter in ca. 1 cm Abstand zum Ende mit einer Pinzette. 3.2. Reiben Sie mit dem Wattestäbchen ca. 1 cm vom Ende innerhalb des Katheters entlang. WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des Bunsenbrenners durchzuführen.

14 Inkubieren Sie für 24 h bei 37°C.
3.3. Führen Sie das Wattestäbchen in engen Zick-Zack- Linien über den Nährboden. Verteilung auf der vollständigen Oberfläche des Agars. Nicht zu stark drücken, um eine Beschädigung des Agars zu vermeiden. 3.4. Schließen Sie die Petrischale. Schreiben Sie auf den Boden der Schale “Box 3” und die Nummer Ihres Tisches. Inkubieren Sie für 24 h bei 37°C.

15 4. Nachweis von bakteriellen Verunreinigungen in Perfusionsflüssigkeit

16 Filtersystem unter Druck Kleine Agar-Petrischale
Verfügbares Material Filtersystem unter Druck Bakterienfilter (vorinstalliert auf dem Filtersystem) Zu testende Perfusions-flüssigkeit Kleine Agar-Petrischale

17 Prinzip der Membran-Filtration für bakteriellen Nachweis
Membran übertragen auf das Kultur-Medium Probe wird gefiltert Membran-Filter fängt Zellen ab Vakuum Inkubieren Kolonien

18 WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des
4.1. Überprüfen Sie das Vorhandensein eines Bakterienfilters auf dem vorinstallierten Filtersystem. Bakterienfilter : Vergrößerte Sicht 4.2. Gießen Sie die Perfusionsflüssigkeit in das Zentrum des Filters. Achten Sie darauf, dass keine Tropfen auf die Wände des Filtersystems gelangen. WARNUNG! Der Probenansatz ist nur in der keimfreien Umgebung des Bunsenbrenners durchzuführen.

19 4. 3. Öffnen Sie den Wasserhahn
4.3. Öffnen Sie den Wasserhahn. Durch das entstehende Vakuum wird die Flüssigkeit durch das Filtersystem gesaugt. Nach der Filtration wird der Wasserhahn geschlossen, um das Vakuum zu stoppen.

20 4.4. Entfernen Sie den oberen Teil des Filtersystem, so dass ein direkter Zugang zum Filter entsteht. 4.5. Entnehmen Sie den Filter mit der Pinzette und legen Sie ihn auf die kleine Petrischale.

21 Nach dem Ablegen üben Sie einen leichten Druck mit einer Pinzette auf den Filter auf dem Agar aus, um eine gute Haftung zu gewährleisten. 4.6. Schließen Sie die Petrischale und schreiben Sie auf den Boden der Schale “Box 4” und die Nummer Ihres Tisches. Inkubieren Sie die Schale für 24 h bei 37°C.

22 Was ist der vermutliche Ursprung für die Kontamination?
5. Ergebnisse Am 2. Tag, nach der Inkubation, prüfen Sie die Oberfläche der verschiedenen Agar-Petrischalen, um nach Bakterienkolonien zu schauen. Was ist der vermutliche Ursprung für die Kontamination?