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SE Polysaccharides (CHE.555)
WS 2011 SE Polysaccharides (CHE.555) Xanthan Simon LEIMGRUBER [ ]
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SE Polysaccharides Übersicht I Herkunft II Chemische Struktur III Supramolekulare Struktur IV Anwendung V Biosynthese VI Industrielle Herstellung VII Analyse & Charakterisierung VIII Datenblatt IX Literatur
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Xanthomonas campestris
I. Herkunft Xanthomonas campestris Xanthan Gram-negativ Aerob Pflanzenpathogen (hohe Ernteverluste) Gerade Stäbchenförmige Einzeller Fortbewegung: polar begeißelt
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II. Chemische Struktur Hauptstrang (1-4)-β-D-Glucose α-D-Mannose
(1,3) verknüpft Seitenkette β-D-Glucuronsäure (1,2) verknüpft β-D-Mannose (1,4) verknüpft
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II. Chemische Struktur Hauptstrang M+ = Na+, K+, ½ Ca2+ α-D-Mannose
R1 = H oder R2, R3 = Seitenkette oder R2, R3 = H oder R2 = H R3 = β-D-Mannose
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SWEET 2 II. Chemische Struktur b-D-Glcp-(1-4)-b-D-Glcp-(1-3)+ |
a-D-Manp-(1-2)-b-D-GlcpUA-(1-4)-b-D-Manp SWEET 2
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III. Supramolekulare Struktur
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III. Supramolekulare Struktur
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III. Supramolekulare Struktur
Thixotrop - Scherverdünnung „Ketchup Effekt“
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Lebensmittelzusatzstoff E415:
IV. Anwendung Lebensmittelzusatzstoff E415: Verdickungsmittel Emulgator Stabilisator ca. 70% des Xanthans in Lebensmittelproduktion Technische Anwendung: Flutungsmittel Suspensionsmittel Emulgatoren
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Aktivierte Zuckernukleotide
V. Biosynthese Aktivierte Zuckernukleotide Uridindiphosphat (UDP)-Glucose Guanosindiphosphat (GDP)-Mannose Uridindiphosphat (UDP)-Glucuronsäure Gruppenüberträger Acetyl-CoA (AcCoA) Phosphoenolpyruvat PEP
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Ankergruppe V. Biosynthese Polyisoprenol Phosphat (Lipid-P)
Aufbau Bakterium
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V. Biosynthese Export Pi Polymer Pi CoA UDP-Glc UMP UDP-Glc Lipid-P
Lipid-P-P-Glc UDP Polymer Lipid-P-P-Glc-Glc Lipid-P-P GDP-Man GDP Lipid-P-P-Glc-Glc-Man Lipid-P-P-Glc-Glc-Man(Ac)-GlcA-Man(Ac,Pyr) CoA Pi AcCoA AcCoA CoA PEP Lipid-P-P-Glc-Glc-Man(Ac)-GlcA-Man Lipid-P-P-Glc-Glc-Man(Ac) UDP-GlcA GDP Lipid-P-P-Glc-Glc-Man(Ac)-GlcA GDP-Man UDP
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V. Biosynthese
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Xanthomonas campestris Xanthan
VI. Industrielle Herstellung Xanthomonas campestris Xanthan Labor
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VI. Industrielle Herstellung
1. Fermentation Xanthomonas campestris Aerob Während exponentiellen Wachstumsphase Schubweise oder kontinuierlich Ausbeute und Eigenschaften abhängig von: Stamm Produktionsbedingungen
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VI. Industrielle Herstellung
2. Nährstoffe Kohlenstoffquelle Glucose, Saccharose Stärke Lactose Stickstoffquelle Organische Komplexe Anorganische Quellen (Ammoniumsalze) Produktion begünstigt, wenn mind. ein Nährstoff limitiert wird
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VI. Industrielle Herstellung
3. Temperatur und pH Optimale Temperatur: 28-30°C Höhere Temperatur Bessere Xanthanausbeute Pyruvatgehalt nimmt ab (schlecht für Qualität) Optimaler pH-Wert: 7 Während Fermentation wird Essigsäure Freigesetzt Zugabe von NaOH oder KOH
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Lösung: sehr hohe Begasungsrate
VI. Industrielle Herstellung 4. Belüftung Sauerstoffeintrag sehr wichtig!!! Extrem hohe Viskosität im Fermenter Massentransfer + Sauerstofftransfer gehemmt Lösung: sehr hohe Begasungsrate
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VI. Industrielle Herstellung
5. Aufarbeitung Reaktionsabbruch: gesamte C-Quelle verstoffwechselt Sterilisation: Abtötung der Bakterien Konformationsänderung, η steigt Fällung des Xanthans in Alkohol Ethanol oder Isopropanol Präzipitat: abtrennen waschen vermahlen
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Bakterienmasse + Proteinreste enthalten
VI. Industrielle Herstellung 5. Aufarbeitung Xanthan noch nicht rein!!! Bakterienmasse + Proteinreste enthalten Reinigung: Filtration Zentrifugation Enzymatischer Abbau Alkohol durch Destillation regeneriert
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Zu berücksichtigende Parameter: Chemische Struktur
VII. Analyse & Charakterisierung Zu berücksichtigende Parameter: Chemische Struktur Acetat und Pyruvat Anteil Molekulargewicht Sekundäre Strukturen Rheologisches Verhalten
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Chemische Charakterisierung
VII. Chemische Charakterisierung Chemische Charakterisierung 1. Zuckerzusammensetzung Cellulose Hauptstrang schwer hydrolysierbar Hydrolyse von β-D-GlcA-(1,2)-α-D-Man führt gleichzeitig zur hydrolyse von Glukuronsäure mehrere Arten der Hydrolyse notwendig Offizielle Beschreibungen geben nicht Chemische Zusammensetzung an Gelierungsvermögen mit Locust Bean Gum
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2. Pyruvat Bestimmung 3. Acetat Bestimmung
VII. Chemische Charakterisierung 2. Pyruvat Bestimmung Kolorimetrisch mit 2,4-Dinitrophenylhydrazin (DNPH) Enzymatisch mit Lactat Dehydrogenase (LDH) Menge an freigesetztem NAD+ bei 340 nm bestimmt Simultane Detektion: HPLC, NMR 3. Acetat Bestimmung Hydroxamsäure LDH/LD Pyruvat + NADH + H Lactat + NAD+
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VII. Physikalische Charakterisierung
1. Molekulargewicht Mw = 4 – 16 * 106 g/mol Polydispersität Mw/Mn = 2,8 Bestimmung schwierig: Hohes Molekulargewicht Steifheit der Moleküle Anwesenheit von Aggregaten Mehrere Analysetechniken: GPC-MALLS AFFF-MALLS Elektronenmikroskopie
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VII. Physikalische Charakterisierung
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GPC-MALLS VII. Physikalische Charakterisierung
GPC Seperation als Funktion der Molekülgröße MALLS Liefert Informationen über Mw Bestimmung des absoluten Mw und Gyrationsradius ohne Säulenkalibration oder Standards Probleme bei Xanthan: Große hydrodynamische Volumen (keine geeignete Säulen) Starken Scherkräften ausgesetzt Molekülzersetzung Probleme bei MALLS auf Nullwinkel zu extrapolieren
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AFFF-MALLS VII. Physikalische Charakterisierung
AFFF Trennung nach Diffusionkoeffizient Messbereich bis zu mehreren µm (Rh) Vorteil: kein Packungsmaterial keine Scherkräfte Nachteil: Fließgeschwindigkeiten, Injektionsvolumen und Lösungsmittel müssen genau abgestimmt werden
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Elektronenmikroskop VII. Physikalische Charakterisierung
Direkte Messung der Xanthan Moleküle Probenvorbereitung: - Vakuumtrocknen - Platinbeschichten Bestimmung der mittleren Konturlänge Mw Detektion der Struktur von Mikrogele
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2. Sekundärstruktur VII. Physikalische Charakterisierung
Verschiedene Techniken notwendig, z.B.: Lichtstreumethoden Hydrodynamische Methoden Bestimmung Thermodynamischer Eigenschaften Kalorimetrische Methoden Methode der Wahl: AFM Bilder von Xanthan Molekülen und Aggregaten Molekulare Wechselwirkungen Weitere Methoden für spezifische Messungen
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3. Rheologie VII. Physikalische Charakterisierung Xanthan Systeme:
Newton‘sche Lösungen Pseudoplastische Lösungen Gel Abhängig von Bedingungen in Lösung: Polymerkonzentration Salzkonzentration Beigabe weiterer Hydrokolloide …
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Grundsätzliche Messung :
VII. Physikalische Charakterisierung Grundsätzliche Messung : Anlegen einer Scherkraft Messung der Scherspannung Bestimmung von: Intrinsische Viskosität η Viskoelastische Eigenschaften: Elastischer Anteil: Speichermodul G` Viskoser Anteil: Verlustmodul G``
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Was ist wichtig über das Produkt zu wissen?
VIII. Datenblatt Was ist wichtig über das Produkt zu wissen? Molekulargewicht: 16*106 g/mol Zuckerverhältnis: D-Glucose : D-Mannose : D-Glucuronsäure = 2 : 2 : 1 Acetatgehalt: 5% Pyruvatgehalt: 3% Je nach Anwendung unterscheiden sich die Datenblätter in ihrer Ausführlichkeit!!!
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VIII. Datenblatt Anwendung in Lebensmitteln: Sensorische Bewertung:
Aussehen weiß - cremefarben Geruch arteigen, einwandfrei Geschmack arteigen, einwandfrei Konsistenz einwandfrei Chemische / Physikalische Daten: pH - Wert ,0 - 8,0 Asche % max. 16 Pyruvat % min. 1,5 Isopropanol mg/kg max. 500 Viskosität cps (1%)BF,LVT,sp.3, 60rpm, 25°C Korngröße durch 25 mesh (0,7 mm) % durch 45 mesh (0,36 mm) nicht mehr als 95 % Schwermetalle ppm max. 20 Blei ppm max. 2 Arsen ppm max. 3 Mikrobiologische Daten: Gesamtkeimzahl p/g max Hefen p/g max. 100 Schimmelpilze p/g max. 100 E. coli / 5 g negativ Salmonellen / 25 g negativ
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Technische Anwendung:
VIII. Datenblatt Technische Anwendung: Aussehen weiß - cremefarben Korngröße mesh Viskosität 1% Lösung in 1% KCL – 1600 cps V1/V – 1.45 pH von 1% Lösung in Wasser 6.0 – 8.0 Feuchtigkeit 13% max Asche 13% max
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IX. Literaturverzeichnis
K. Born, V. Langendorff, P. Boulenguer, Xanthan. Biopolymers Online. Wiley-VCH Verlag, G. Antranikian. Angewandte Mikrobiologie. Springer-Verlag, Heidelberg, H.-D. Beltz, W. Grosch, P. Schieberie. Food Chemistry, 3rd Edition, Springer, G. Holzwarth. Moleculat weight of xanthan polysaccharide. Carbohydrate Research. 66: , Internet:
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