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Zellkulturtechnik
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Themengliederung Allgemeines Zellkuturtypen
Voraussetzungen für Zellkulturen
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Zellkulturtechnik Vorteile: In vivo - Untersuchung schwierig
Definierte Bedingungen
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Komplexität - Manipulierbarkeit
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Zellkulturtypen Primärkultur Zelllinien Organotypische Schnittkulturen
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Primärkulturen Zellen direkt aus dem Lebewesen entnommen
Klassisches Beispiel: Hippocampus des Rattenembryos -> Pyramidenzellen
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Entwicklung der Pyramidenzellen
Zellen beim Ausplattieren rund Bilden dynamische Membran – ausstülpungen = Lamellipodien
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Entwicklung der Pyramidenzellen
Bildung von nicht unterscheidbaren Zellausläufer = Neuriten
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Entwicklung der Pyramidenzellen
Ein Zellausläufer entwickelt sich schneller Axonale Morphologie Entwicklung von Polarität
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Entwicklung der Pyramidenzellen
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Tau Protein Während Entwicklung von Polarität im Axon angereichert
Mikrotubuli assoziiert Tauopathien (z.B. Morbus Alzheimer)
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Zelllinien können permanent in Kultur gehalten und vermehrt werden
Unbegrenzt Teilungsfähig z.B. aus Tumor gewonnen
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Zelllinien: PC12 Oft verwendete Linie
Begrenzte Fähigkeit zur Differenzierung Durch NGF -> Neuriten Bildung
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Zelllinien: NT2-N/hNT NT2 Vorläuferzellen
Nach Vit A – Säure Behandlung: Fähigkeit zur Differenzierung
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Organotypische Schnittkulturen
Lokale Gewebearchitektur bleibt erhalten Vorteil: Vergleichbarkeit zum in vivo-Zustand Nachteil: „Verletzungstrauma“
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Auswahl des Gewebes Welche Tierspezies? Welcher Zelltyp? Maus, Ratte
Entwicklungszeitpunkt -> unterschiedlich je nach Hirnregion - Differenzierungsstadium <-> Regeneration
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Kultivierungsbedingungen
Nährmedium kann Zelltyp selektieren DMEM Kollagen/Polylysin als Haftoberfläche
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Indirekte Immunperoxidase Technik
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Avidin-Biotin-Technik
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Quellen „Methoden der Hirnforschung“, Kischka, Wallesch, Wolf – Spektrum Verlag „Zell- und Gewebekultur“, Lindl – Spektrum Verlag
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Vielen Dank für Ihre Aufmerksamkeit !
Zellkulturtechnik Vielen Dank für Ihre Aufmerksamkeit !
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